泰澤隱孢子蟲探針法熒光定量PCR試劑盒實驗規則：

1、要保證移液槍的準確性，誤差不能超過2%。可用水和電子天平進行確定。但有專業人員進行矯正。

2、要配備20ul、50ul、100ul、1000ul和排槍各一支。吸取不同的液體后，要更換槍頭。即使是吸取標準品時。

3、要在實驗前1小時將試劑盒從冰箱中取出，使各種試劑都恢復到室溫，以使結果更穩定。

4、實驗時，要使底物避光保存。

5、用槍吸取液體時速度不能太快，以免產生氣泡而使吸取量不準確。

6、吸取液體時，要用量程和需要量接近的槍去吸，減少誤差。

7、將液體加到酶標孔中時，避免槍頭和孔內液體接觸，可使槍頭上的液滴和孔壁接觸，液滴會自然流下去。

8、液體全部加完后，可將酶標板在桌子上平行輕輕晃動30秒，混勻液體。也可以用酶標儀的晃動功能。

9、應盡量做雙孔實驗，這樣才能保證數據的準確性。

10、對結果有疑問的樣品要用其它方法進行確證。

?為確保實驗數據的可靠性和重復性，實驗人員需嚴格遵守以下補充操作規范：

11. 反應板密封時需使用光學級封板膜，避免PCR反應過程中蒸發導致體系濃度變化。封膜前應檢查孔邊緣有無液體殘留，防止交叉污染。

12. 擴增程序設置時需進行溫度校準，建議使用第三方溫度驗證儀對PCR儀各孔位進行梯度檢測，溫差應控制在±0.3℃范圍內。

13. 熒光信號采集階段應關閉實驗室光源，避免環境光干擾。建議在反應板上方加裝遮光罩，特別是使用多通道檢測時。

14. 每次實驗必須設置NTC（無模板對照）和陽性對照。NTC出現擴增曲線時，需排查氣溶膠污染可能性，建議使用含UDG酶的防污染體系。

15. 數據分析時采用儀器配套軟件進行基線自動校正，手動調整范圍應控制在3-15個循環之間。對于非典型擴增曲線（如鋸齒狀、平臺期不穩），需用原始數據復核閾值設定。

16. 實驗結束后所有接觸過核酸的耗材需浸泡于10%次氯酸鈉溶液30分鐘，高壓滅菌處理后丟棄。工作臺面需用RNAase去污劑擦拭，紫外線照射30分鐘。

17. 標準品稀釋應選擇低吸附離心管，采用"渦旋-瞬時離心"的混勻方式。梯度稀釋時每次更換移液器吸頭，避免產生氣溶膠。

18. 建立實驗記錄追溯體系，包括試劑批號、儀器運行參數、環境溫濕度、操作人員等信息。建議對關鍵步驟進行雙人復核簽字。

19. 定期進行室間質評，每季度至少參與一次實驗室間比對。當Ct值偏差＞1.5時，需啟動儀器維護程序。

20. 建立異常結果處理流程：異常應重復檢測，二次異常需更換試劑批次復檢，三次異常啟動偏差調查程序并形成書面報告。